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核酸、蛋白质杂交用相关试剂、缓冲液的配制方法20×SSC ■ 组份浓度 3.0 M NaCl,0.3 M 柠檬酸钠 ■ 配制量 1 L ■ 配制方法 1. 称量下列试剂,置于 1 L 烧杯中。 NaCl 175.3 g 柠檬酸钠·2H2O 88.2 g 2. 向烧杯中加入约 800 ml 的去离子水,充分搅拌溶解。 3. 滴加 14 N HCl,调节 pH 值至 7.0 后,加去离子水将溶液定容至 1 L。 4. 高温高压灭菌后,室温保存。 20×SSPE Buffer ■ 组份浓度 3.0 M NaCl,0.2 M NaH2PO4,0.02 M EDTA ■ 配制量 1 L ■ 配制方法 1. 称量下列试剂,置于 1 L 烧杯中。 NaCl 175.3 g NaH2PO4·H2O 27.6 g Na2EDTA·2H2O 7.4 g 2. 向烧杯中加入约 800 ml 的去离子水,充分搅拌溶解。 3. 加 NaOH 调节 pH 值至 7.4(约 6.5 ml 的 10 N NaOH)。 4. 加去离子水将溶液定容至 1 L。 5. 高温高压灭菌后,室温保存。 50×Denhardt’s 溶液 ■ 组份浓度 1%(W/V) Ficoll 400 1%(W/V) Polyvinylpyrrolidone 1%(W/V) BSA ■ 配制量 500 ml ■ 配制方法 1. 称量下列试剂,置于 500 ml 烧杯中。 Ficoll 400 5 g Polyvinylpyrrolidone 5 g BSA 5 g 2. 加去离子水约 400 ml,充分搅拌溶解。 3. 加去离子水将溶液定容至 500 ml。 4. 用 0.45 μm 滤器过滤后,分装成每份 25 ml。 5. -20℃保存。 0.5 M 磷酸盐缓冲液 ■ 组份浓度 0.5 M Na2HPO4 ■ 配制量 1 L ■ 配制方法 1. 称量 134 g Na2HPO4·7H2O 置于 1 L 烧杯中。 2. 加入约 800 ml 的去离子水充分搅拌溶解。 3. 加入 85%的 H3PO4(浓磷酸)调节溶液 pH 值至 7.2。 4. 加去离子水定容至 1 L。 5. 高温高压灭菌后,室温保存。 Salmon DNA (鲑鱼精 DNA) ■ 组份浓度 10 mg/ml Salmon DNA ■ 配制量 约 100 ml ■ 配制方法 1. 称取鲑鱼精 DNA 2 g 置于 500 ml 烧杯中,加入约 200 ml的 TE Buffer。 2. 用磁力搅拌器室温搅拌 2~4 小时,溶解后加入 4 ml 的5 M NaCl,使其终浓度为 0.1 M。 3. 用苯酚和苯酚/氯仿各抽提 1 次。 4. 回收水相溶液后,使用 17 号皮下注射针头快速吸打溶液约 20 次,以切断 DNA。 5. 加入 2 倍体积的预冷乙醇进行乙醇沉淀。 6. 离心回收 DNA 后,溶解于 100 ml 的去离子水中,测定溶液的 OD260 值。 7. 计算溶液的 DNA 浓度后,稀释 DNA 溶液至 10 mg/ml。 8. 煮沸 10 分钟后,分装成小份(1 ml/份)。-20℃保存。 9. 使用前在沸水浴中加热 5 分钟后,迅速冰浴冷却。 DNA 变性缓冲液 ■ 组份浓度 1.5 M NaCl,0.5 M NaOH ■ 配制量 1 L ■ 配制方法 1. 称量下列试剂,置于 1 L 烧杯中。 NaCl 87.7 g NaOH 20 g 2. 向烧杯中加入约 800 ml 的去离子水,充分搅拌溶解。 3. 加去离子水将溶液定容至 1 L 后,室温保存。 预杂交液/杂交液(DNA 杂交用) ■ 组份浓度 6× SSC(或 SSPE) 5× Denhardt’s 0.5%(W/V) SDS 100 μg/ml Salmon DNA ■ 配制量 100 ml ■ 配制方法 1. 称量下列试剂,置于 200 ml 烧杯中。 20×SSC(或 SSPE) 30 ml 50×Denhardt’s 10 ml 10% SDS 5 ml 10 mg/ml Salmon DNA 1 ml dH2O 54 ml 2. 充分混匀后,使用 0.45 μm 滤器滤去杂质后使用。 预杂交液/杂交液(RNA 杂交用) ■ 组份浓度 6× SSC(或 SSPE) 5× Denhardt’s 0.5%(W/V) SDS 100 μg/ml Salmon DNA 50%(V/V) Formamide ■ 配制量 100 ml ■ 配制方法 1. 称量下列试剂,置于 200 ml 烧杯中。 20×SSC(或 SSPE) 30 ml 50×Denhardt’s 10 ml 10% SDS 5 ml 10 mg/ml Salmon DNA 1 ml Formamide 50 ml dH2O 4 ml 2. 充分混匀后,使用 0.45 μm 滤器滤去杂质后使用。 膜转移缓冲液 (Western 杂交用) ■ 组份浓度 39 mM Glycine,48 mM Tris,0.037%(W/V)SDS,20%(V/V)甲醇 ■ 配制量 1 L ■ 配制方法 1. 称量下列试剂,置于 1 L 烧杯中。 Glycine 2.9 g Tris 5.8 g SDS 0.37 g 2. 向烧杯中加入约 600 ml 的去离子水,充分搅拌溶解。 3. 加去离子水将溶液定容至 800 ml 后,加入 200 ml 的甲醇。 4. 室温保存。 TBST Buffer (Western 杂交膜清洗液) ■ 组份浓度 20 mM Tris-HCl,150 mM NaCl,0.05%(V/V)Tween 20 ■ 配制量 1 L ■ 配制方法 1. 称量下列试剂,置于 1 L 烧杯中。 NaCl 8.8 g 1 M Tris-HCl(pH8.0) 20 ml 2. 向烧杯中加入约 800 ml 的去离子水,充分搅拌溶解。 3. 加入 0.5 ml Tween 20 后充分混匀。 4. 加去离子水将溶液定容至 1 L 后,4℃保存。 封闭缓冲液 (Western 杂交用) ■ 组份浓度 5%(W/V)脱脂奶粉/TBST Buffer ■ 配制量 100 ml ■ 配制方法 1. 称量 5 g 脱脂奶粉加入到 100 ml 的 TBST Buffer 中,充分搅拌溶解。 2. 4℃保存待用(本封闭液应该现配现用)。 上一篇实验室常用培养基的配制方法下一篇血凝抑制试验 |